Влияние препаратов, содержащих глюконолактон, на морфологические показатели крови кроликов

Разведение кроликов в современном сельском хозяйстве — довольно перспективное направление животноводства. Кроличье мясо обладает множеством полезных свойств и считается продуктом диетического питания, рекомендованного в том числе и для детского меню, благодаря гипоаллергенности и легкому усвоению организмом, ввиду чего занимает важное место в структуре сельскохозяйственного производства и имеет довольно высокий спрос на продукцию.

Как известно, качественные и количественные показатели продуктивности кроликов зависят от полноценного и сбалансированного кормления. При этом важным фактором является не только правильное сочетание питательных компонентов, но и режим кормления.

Помимо правильно подобранных рационов, на состояние животных влияют условия микроклимата, созданного в местах выращивания кроликов, которые во многом зависят от современного технического оснащения и автоматизации процессов.

Содержание животных, предполагающее минимальную двигательную активность, положительным образом сказывается лишь на привесе живой массы, на состоянии же иммунной системы такое содержание сказывается весьма негативно.

Кролики достаточно активные животные, и уследить за ними крайне сложно, в связи с чем в настоящее время довольно распространенным типом содержания кроликов является шедовое. Такой подход к содержанию кроликов обусловлен еще и тем, что шедовое содержание позволяет улучшить условия естественного освещения и воздухообмена.

Ультрафиолет, который является частью естественного для солнечного света спектра излучения, оказывает легкое обеззараживающее воздействие, что благоприятно сказывается на условиях содержания животных.

Кролики, как и другие животные, могут получать антиоксиданты из растительной пищи, но их концентрация может быть недостаточной для полноценной защиты от окислительного стресса. Для стабилизации кормовых рационов применяются различные биологически активные добавки, позволяющие повысить эффективность выращивания животных и улучшить показатели продуктивности.

Существует ряд исследований, подтверждающих эффективность применения полигидрокислот в кормовых рационах животных, в том числе и кроликов. Однако необходимо учитывать, что выбор и дозировка антиоксидантов должны быть оптимальными, чтобы укрепить организм животных и улучшить качество получаемой мясной продукции.

Ввиду этого применение полигидрокислот в качестве биологически активных добавок к рациону — это перспективное направление исследований.

Полигидрокислоты, являющиеся антиоксидантами, при регулярном введении с пищей способствуют повышению общей резистентности организма, стимулируют рост и здоровое развитие животных, что в свою очередь ведет к получению качественной продукции сельского хозяйства.

Полигидрокислоты, являющиеся антиоксидантами, при регулярном введении с пищей способствуют повышению общей резистентности организма животных, стимулируют их рост и здоровое развитие животных. Глюконолактон хорошо растворим в воде, как и молочная кислота, но при этом имеет больший размер молекулы, что позволяет ему обеспечить куда более мягкое и гипоаллергенное воздействие на организм.

Таким образом, полигидрокислоты, в частности глюконолактон, хорошо подходят для чувствительных животных, которые требуют максимально заботливого выращивания. Механизм действия полигидрокислот сходен с химической активностью альфа-гидрокислот (AHA).

Цель исследования — оценка влияния препаратов, содержащих глюконолактон, на морфологические показатели крови кроликов.

Материалы и методы исследования

Исследования были проведены в условиях частной кролиководческой фермы (с. Зубенки, Рязанский р-н, Рязанская обл., Россия).

Период исследований — 2022 г.

Объект исследования — биологическая активная добавка «Глюконолактон Е575 Рокетт SG» (Roquette® Glucono delta-Lactone SG-Е575) производства ООО «Рокетт Рус» (г. Москва, Россия). Эмпирическая формула препарата: C6H10O6. В состав препарата входят глюконо-d-лактон (не менее 99%), свободная глюконовая кислота и остаточные сахариды (до 1%).

Для экспериментальных исследований были отобраны самцы кроликов методом пар-аналогов в количестве 20 голов по следующим параметрам: порода — шиншилла, возраст — 30 суток, вес — 1 кг (+/- 100 г), лекарственный анамнез — не отягощенный приемом препаратов.

После ветеринарного осмотра и контрольного взвешивания кролики были разделены на две группы по 10 голов — контрольную и опытную.

Кролики опытной и контрольной групп содержались в одинаковых условиях, характерных для климатических условий Рязанской области в летний период: на свежем воздухе под навесом друг напротив друга были установлены двухъярусные шеды, каждому кролику была выделена индивидуальная клетка.

Выбор шедового содержания кроликов был обусловлен тем, что достаточно теплый климат и свежий воздух в летний период благоприятствуют росту и развитию животных.

Основа рациона животных обеих групп была составлена идентично на основании норм и рекомендаций, содержащихся в ГОСТ 34088.

Рацион кроликов был составлен в соответствии с их возрастом, весом, состоянием здоровья и физиологическими потребностями.

Основу рациона составляли полнорационный гранулированный комбикорм, зерно и высокобелковые травы (люцерна и клевер).

Различия в питании состояли лишь в том, что кроликам опытной группы вносили в корм биологически активную добавку два раза в день (во время утреннего и вечернего кормления) в дозировке 250 мг/кг, в отличие от кроликов контрольной группы.

Животные содержались в максимально аналогичных условиях, получая соответствующий уход. Контроль динамики веса осуществлялся путем взвешивания каждое первое число месяца (весы напольные ветеринарные Wikivet, ООО «Виквет», Россия).

Мониторинг гематологических показателей, представленных в работе (лимфоцитов (LYMP), моноцитов (MON), гранулоцитов (GRAN), гематокрита (HTC), относительной ширины распределения эритроцитов (RDW) и тромбоцитов (PDW) по объему крови), осуществлялся путем еженедельного забора проб в пробирку «IMPROMINI с ЭДТА К3» объемом 0,2–0,5 мл (Guangzhou Improve Medical Instruments Co., Китай, официальный импортер ООО Expomedical, Россия) и исследования показателей общего анализа крови при помощи гематологического анализатора крови класса 3-diff Mindray BC-2800vet (Shenzhen Mindray Bio-Medical Electronics Company Limited, Китай, официальный импортер ООО «Зоомед», Россия) в условиях ветеринарной лаборатории «9 жизней» (ООО «Ветеринарная медицина», г. Рязань, Россия).

Авторы статьи заявляют о соблюдении положений ГОСТ 34088 и Федерального закона Российской Федерации от 27.12.2018 № 498-ФЗ.

Цифровые данные, полученные в результате исследований, были статистически обработаны по методике Стьюдента (достоверным отклонением считается разница при р < 0,05). Вычисления были проведены при помощи информационных продуктов Statistica (США) и Microsoft Office Excel 2003 (США).

Результаты и обсуждение

Результаты экспериментальных исследований общего анализа крови, полученные в ходе проведения опыта, показали, что в контрольной группе уровень лейкоцитов повысился к концу опытного периода почти на 10,2 ± 0,3 *10^9/L, что говорит о вероятности воспалительных процессов в организме животных. Предположительно, негативные тенденции в динамике показателей крови контрольной группы пришлись на резкое снижение температуры окружающего воздуха (более 10 oC) в период проведения опытов.

Опираясь на результаты анализов, был поставлен предварительный диагноз: бактериальная инфекция. Вскрытие показало, что смерть наступила в результате острой почечной недостаточности. Резкое падение температуры окружающей среды к концу опытного периода (более чем на 10 oC), возможно, оказало негативное влияние на состояние организма животных. По причине переохлаждения у животных произошло снижение уровня иммунной защиты, что могло привести к возникновению и развитию инфекционного заболевания с последующими воспалительными процессами в организме кроликов контрольной группы.

Согласно ранее опубликованным данным, результаты, полученные в период применения в качестве биологически активной добавки препарата «Глюконолактон Е575 Рокетт SG», позволили сделать вывод, что у кроликов опытной группы показатели крови на конец опытного периода претерпели минимальные изменения, связанные с нормальными возрастными изменениями животных, в то время как у кроликов контрольной группы наблюдалось повышение уровня лейкоцитов со сдвигом лейкоцитарной формулы влево.

В начале опытного периода было произведено контрольное взвешивание подопытных животных. Живая масса месячных кроликов при постановке на опыт варьировалась от 0,9 кг до 1,2 кг. Масса тела кроликов опытной группы в среднем составляла 0,9–1,0 кг, в то время как в контрольной группе масса варьировалась в пределах 0,9–1,2 кг.

Таким образом, разница масс составила не более 1%, что соответствует условиям опыта с животными-аналогами.

Введение в рацион препарата «Глюконолактон Е575 Рокетт SG» положительно отразилось на приросте живой массы кроликов экспериментальной группы (рис 1).

Как видно из рисунка 1, на протяжении экспериментального периода кролики опытной группы набирали живую массу активнее, чем кролики контрольной группы. При финальном взвешивании в конце эксперимента (01.09.2022) средняя масса кроликов опытной группы была выше и составляла 3,8–4,1 кг, в то время как в контрольной группе аналогичный показатель варьировался в пределах 3,6–3,8 кг.

Таким образом, обогащение кормов рациона глюконолактоном способствовало более активному набору массы тела у кроликов опытной группы относительно контрольной в условиях данного эксперимента.

Динамика изменения показателей крови подтверждает гипотезу о возможном положительном влиянии препарата «Глюконолактон Е575 Рокетт SG» на состояние организма кроликов.

На рисунке 2 представлена динамика изменения концентрации лимфоцитов, моноцитов и гранулоцитов крови кроликов.

Как видно из рисунка 2, у кроликов экспериментальной группы уровень лимфоцитов находился в пределах нормы на протяжении всего опытного периода, а у кроликов контрольной группы в период после 10 августа число лимфоцитов в крови стало резко снижаться (с 2,5 ± 0,2 *10^9/L до 0,2 ± 0,1 *10^9/L), что может свидетельствовать о падении иммунной защиты в результате борьбы с бактериальной инфекцией (вероятность вирусной инфекции необходимо исключить, поскольку при вирусной инфекции количество лимфоцитов растет). При этом наблюдаются незначительный рост количества моноцитов (на 0,2 ± 0,1 *10^9/L) и довольно резкий рост гранулоцитов (почти в 2,8 раза), что свидетельствует о быстром развитии инфекционного процесса.

Для прояснения клинической картины в условиях опыта были проанализированы другие показатели общего анализа крови, представленные на рисунках 3, 4.

Как показывает анализ, к концу опытного периода уровень гематокрита у кроликов контрольной группы снизился на 7,1%, а относительная ширина распределения эритроцитов по объему — на 2,8%, концентрация эритроцитов — на 2,43 ± 0,2 *10^12/L, а концентрация гемоглобина — на 9 ± 1 g/L.

Динамика тромбоцитов у кроликов опытной группы в целом находилась в пределах нормы. У кроликов контрольной группы динамика тромбоцитов имеет некоторые негативные отклонения (снижение относительной ширины распределения тромбоцитов по объему на 0,7%, концентрации — на 106 ± 2*10^9/L), что дополняет общую картину анализа крови животных, указывая на вероятность инфекционного заболевания (рис. 4).

Анализ полученных данных эксперимента заставил обратить внимание на то, что негативные тенденции в динамике показателей крови контрольной группы пришлись на резкое снижение температуры окружающего воздуха в период проведения исследований.

В результате переохлаждения негативные изменения коснулись таких показателей, как лейкоциты, эритроциты и тромбоциты, что напрямую было связано с протекающими воспалительными процессами в организме кроликов контрольной группы. У части животных в контрольной группе получила развитие бактериальная инфекция, давшая осложнение на мочевыделительную систему, что и привело к летальному исходу от почечной недостаточности.

Гематологические показатели кроликов в опытной группе оставались в пределах нормы на протяжении всего времени проведения эксперимента при аналогичных условиях содержания и составе базового рациона кормления у кроликов обеих групп.

Таким образом, обогащение кормового рациона кроликов экспериментальной группы глюконолактоном, который относится к группе полигидроксикислот, способствовало улучшению общего состояния организма животных (в условиях данного эксперимента).

Выводы

Результаты, полученные на основании исследования динамики гематологических показателей крови в контрольной и опытной группах, позволили сделать вывод о возможном положительном влиянии препарата «Глюконолактон Е575 Рокетт SG» на иммунную систему и общую резистентность организма кроликов даже в условиях воздействия неблагоприятных факторов внешней среды в виде снижения температуры окружающего воздуха. Это связано с тем, что глюконолактон является природным антиоксидантом и обладает свойством связывать и нейтрализовывать продукты окисления непосредственно в крови животных, что позволило повысить устойчивость организма кроликов и оказало положительный общеукрепляющий эффект на иммунную систему. Обогащение кормового рациона глюконолактоном способствовало более активному набору массы тела у кроликов опытной группы относительно контрольной (средняя масса кроликов опытной группы была выше и составляла 3,8–4,1 кг, в то время как в контрольной группе аналогичный показатель варьировался в пределах 3,6–3,8 кг.). Необходимо отметить, что животные опытной группы охотнее поедали обогащенные корма.

Таким образом, включение в рацион кроликов биологически активной добавки «Глюконолактон Е575 Рокетт SG», возможно, способствует укреплению иммунной системы, повышению интенсивности роста и увеличению живой массы кроликов, что, наиболее вероятно, связано с улучшением обменных процессов за счет возрастания активности антиоксидантной системы организма животных.

Об авторах

Ангелина Владимировна Гусарова1; аспирант

linoshca@yandex.ru

Константин Александрович Иванищев1; кандидат ветеринарных наук, доцент кафедры анатомии и физиологии животных

konstantinivanishev@mail.ru; https://orcid.org/ 0000-0003-0535-4070

Юлия Олеговна Лящук2; кандидат технических наук, научный сотрудник

ularzn@mail.ru; https://orcid.org/0000-0002-3612-1707

Алексей Юрьевич Овчинников2; научный сотрудник

aleksovchinn@gmail.com; https://orcid.org/0000-0002-2188-1527

Геннадий Николаевич Самарин2, 3; доктор технических наук, главный научный сотрудник, заведующий лабораторией инновационных технологий и технических средств кормления в животноводстве2;доктор технических наук, профессор кафедры энергообеспечения сельского хозяйства3

samaringn@yandex.ru; https://orcid.org/0000-0002-4972-8647

1Рязанский государственный агротехнологический университет им. П.А. Костычева, ул. им. Костычева, 1, Рязань, 390044, Россия

2Федеральный научный агроинженерный центр ВИМ, 1-й Институтский проезд, 5, Москва, 109428, Россия

3Государственный аграрный университет Северного Зауралья, ул. Республики, 7, Тюмень, 625003, Россия

УДК 636.92;616.15; 678.048
DOI: 10.32634/0869-8155-2024-386-9-48-53

Просмотров: 138